A，VERO，TMPRSS2表达VERO和CALU-3细胞与相应的抑制剂（0μM，0.01μm，0.1μm，0.1μm，1μM，10μM或100μM）预孵育2小时，然后再接种，然后用复制的培养基培养基果皮螺纹杆菌杆菌蛋白质源代码源，并用复制性的培养基型囊状稳定剂置换。顶部，评估了病毒的转导效率。底部，未与病毒颗粒接种细胞，而是在定量转导后同时评估药物治疗后的细胞活力。通过测量细胞裂解物中病毒编码的荧光素酶活性来量化转导效率。使用CellTiter-GLO分析测量细胞活力。数据是平均±S.E.M.在三个生物学重复的中，每种都由四倍的样品组成。与未经处理的细胞相比，将数据标准化为抑制剂处理细胞的相对进入效率或细胞活力（设置为100％）。表1中总结了计算出的50％抑制浓度（IC50）值。B，未处理或氯喹率取代的Vero和Calu-3细胞用SARS-COV-2慕尼黑分离株接种（患者分离株929，BetaCov/BetaCov/BetaCov/BetaCov/BetaCov/Munich/bavpat1/bavpat1/2020 | Epi_isl_isl_40662）。接种24小时后，从培养的上清液（细胞外病毒）（深蓝色）和感染细胞（细胞内病毒）（浅蓝色）和SARS-COV-2基因组等效物（GE）中分离病毒RNA，通过反向转录的定量PCR确定。数据是平均±S.E.M.在三个生物学重复的中，每种都由单个样品组成。C，如B中所述进行了实验，但是通过使用Vero E6细胞斑块滴定，培养上清液中传染性SARS-COV-2颗粒的数量是确定的。PFU，形成斑块的单元。通过邓内特的事后检验，通过双向方差分析（ANOVA）分析统计显着性。NS，不显着（p> 0.05）;*p≤0.05;**p≤0.01;***p≤0.001。p值 （从左到右）如下。a, Entry efficiency (camostat mesylate/chloroquine/hydroxychloroquine), Vero (0.9999/0.8​​587/0.9997, 0.9842/0.9846/0.3904, 0.6860/0.0991/0.0223, 0.9968/0.0001/0.0001, 0.9997/0.0001/0.0001),TMPRSS2表达VERO（0.9999/0.9968/0.9795，0.1251/0.9962/0.99998，0.0004/0.9997/0.9997/0.9999，0.0001/0.9967/0.9967/0.9982，0.0001/0.9981/0.9981/0.9981/0.999986; CALUU-33（0.9900/0.9999/0.9986，0.0003/0.9999/0.9983，0.0001/0.9988/0.9929，0.0001/0.1291/0.9938，0.0001/0.0001/0.0001/0.0005/0.0005/0.0045）（0.9273/0.9999/0.9999，0.9999/0.8​​710/0.9642，0.9999/0.9996/0.9996/0.9999，0.9999/0.8​​958/0.4818，0.9998/0.9998/0.0838/0.0161）（0.9998/0.9999/0.9959，0.9811/0.9985/0.9362，0.9998/0.9985/0.9985/0.9997，0.9997，0.8835/0.99998，0.9999/0.9999/0.0315/0.1422）0.999/0.9997/0.9999，0.9986/0.9999/0.8​​134，0.9924/0.9275/0.9275/0.7125，0.9983/0.0492/0.0492/0.0002）0.0002/0.0001），Calu-3（0.9434/0.8800，0.9999/0.8​​830，0.0517/0.3924）。

　　源数据